蛋白质芯片适合什么样品检测，该如何收集样品

1、适用于蛋白质芯片的常见样品

血清、血浆、细胞培养上清、细胞裂解液、组织裂解液；除了这些常见的样品，全世界客户使用 RayBiotech芯片检测成功的特殊样品还有尿液、眼泪、唾液、痰、脑脊液、前列腺液、腹腔注射液、奶水、初乳、支气管肺泡灌洗液、脓肿液、中耳液、血小板释放物、骨头裂解液、精浆液、卵泡液、囊泡液等。

目前有客户发表文献测试过的组织裂解液有肺组织、支气管、子宫内膜组织，肝脏组织，宫颈肿瘤、脾、脑组织、宫颈组织、囊肿组织等。

2、样品的收集方法

血清：收集全血至普通离心管或者采血管（BD vacutainer公司的红头真空采血管，不含抗凝 剂、防腐剂或者分离剂）,室温放置30-45min， 以3000-5000 rpm/min离心10 min，取上清检测或者冻存（-80℃）。

血浆：收集全血至BD vacutainer公司的EDTAK2、肝素锂、或者枸橼酸钠等真空采血管，以3000-5000 rpm/mL离心10 min，取上清检测或者冻存（ -80℃）。

尿液：收集不添加稳定剂的尿液样本，高速离心样本(如10000g离心1min或5000g 离心2min)， 取上清分装，利用干冰或甲醇浴使样本迅速结冻，储存于-80℃备用。

细胞上清（条件培养基）：血清中含有部分细胞因子，所以建议制备无血清或低血清条件培养基。例如，于培养皿或培养板中加入完全培养基，接种细胞；细胞贴壁后，加入含药物的6-8 ml无血清或低血清（低于2%胎牛血清）培养基作用细 胞；待药物作用时间点到达时,确保细胞融合度达到90%以 上，收集培养上清于15ml离心管中，2000rpm、4℃离心10 min，收集上清，分装于1.5mL EP管，储存于-80℃中。

细胞上清归一化方法: 对于细胞上清的检测，不同组之间需 要接种同样数量的细胞、加入同样体积培养基，培养同样时间后收集样品。

细胞裂解液：待药物作用时间点到达时,确保细胞融合度达到90%以上, 将上清吸掉，用 PBS (4℃)清洗2次细胞，加入150-200μl细胞裂解液（或者参照您购买的裂解液说明书），快速将细胞从培养板刮下 ,收集细胞裂解液，加入微量离心管中，冰浴30min，期间每10min使用涡旋器涡旋30s。或者吸弃上清，用PBS洗涤细胞2次后，加入PBS刮落细胞， 收集于离心管中，2000-3000rpm 4℃离心10min，弃上清。加入100-150μl细胞裂解液，冰浴30min,期间每10min使用涡旋器涡旋30s。14000rpm 4℃离心混合液10min,吸取清澈上清于干净的离心管中（确保只吸取上层清澈细胞上清，如果上清出现絮状或者浑浊，将细胞裂解液上清转入干净的离心管中，于14000 rpm 4℃再次离心15 -20 min 后取上清）。建议裂解蛋白浓度至少2 mg/ml以上，上样时稀释倍数约5-10倍，上样浓度建议为500ug/ml。

组织裂解液：将组织切成小块，转移至2ml离心管，建议100 mg组织加入500μl裂解液（或者参照您购买的裂解液说明书），使用研浆机将组织打碎，冰浴14000 rpm 4℃离心混合液15-20 min，将清澈上清转入干净的离心管中（确保只吸取顶层清澈上清，如果上清出现絮状或者浑浊，将上清转入干净的离心管中，14000 rpm 4℃再次离心15-20 min后取上清）。